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pH et fertilité des sols - Vidéos - Questions

La journée technique « pH et fertilité des sols » organisée par le COMIFER, Comité Français d’Etude et de Développement de la fertilisation Raisonnée prévue initialement le 12 mars 2020 s’est déroulée le mercredi 28 octobre 2020, en distanciel.

Sous le haut patronage du Ministère de l’Agriculture et de l’Alimentation et avec le soutien de l’APCA, cette journée technique a suscité l’intéret de plus de 220 participants professionnels.

Sous le haut patronage

Avec le soutien

Sponsors

Vous avez assisté à la Journée Technique du COMIFER « pH et fertilité des sols » le 28 octobre en visioconférence.

Cette thématique a rencontré un vif succès et généré de nombreux échanges lors des temps de discussions.
Vous trouverez ci-dessous des compléments d’information apportés par chacun des présentateurs aux questions posées dans le tchat et qui n’ont pu être traitées le jour J. Il est possible que certains propos suscitent de nouveaux débats auxquels nous vous invitons à participer lors des prochaines réunions de notre Groupe de Travail SAB – Statut Acido-Basique.

N’oubliez pas également d’aller consulter la brochure Chaulage pour répondre à vos questions !

Visionnez les différentes interventions de cette journée :

Ouverture de la matinée par le président de séance Bruno Félix-Faure, Responsable Agronomie -Eurofins Galys- et Animateur du Groupe de Travail SAB “Statut Acido-Basique” du Comifer

Connaissances des impacts du pH sur la durabilité des sols, la productivité des cultures, les enjeux environnementaux et sanitaires

Particularité des sols acides et des sols calcaires – Rappel des mécanismes d’acidification
Philippe Cambier – Inrae – AgroParisTech Ecosys

Q1 : Quel est l’impact de gros apports de souffre sur la CEC et le pH ?

L’apport de soufre élémentaire (S) est un moyen d’acidification des sols, subordonné à la condition et à la cinétique de son oxydation. L’oxydation du soufre a lieu principalement en présence d’oxygène et est catalysée par des bactéries du genre Thiobacille. Thiobacillus thiooxidans notamment, aérobie, acidophile et chimiotrophe, utilise O2 et CO2 de l’air, et le soufre, pour croître en produisant de l’acide sulfurique. D’autres bactéries peuvent oxyder S, y compris anaérobies, mais la cinétique est bien supérieure en conditions aérobies et acides. Dans les sols carbonatés, l’apport de S aura donc un effet acidifiant très progressif, voire nul, du fait du pH défavorable à la majorité des bactéries oxydantes, et du fait du pouvoir tampon qui augmente avec la teneur en carbonate.
L’effet sur la CEC du sol suivra l’effet sur le pH, un pH plus acide accroissant les charges variables positives (et diminuant les négatives), d’où une diminution de la CEC. Il est vrai que l’abondance de sulfate produit par l’oxydation de S (de même que du sulfate apporté dans des engrais par exemple), entraîne l’adsorption de SO42-, facilitant l’adsorption de cations via les équilibres électrochimiques de surface, d’où un effet opposé (augmentation de la CEC). Mais cet effet sur la CEC est certainement inférieur au premier effet lié à la variation de pH, car l’adsorption de SO42- est relativement faible (beaucoup plus faible que celle des phosphates par exemple).

Diagnostic de l’évolution des pH dans les sols agricoles français, à partir de la Base de Données d’Analyses de Terre – BDAT
Nicolas Saby – Inrae

Q2 : Est-ce que le programme GIS SOL et la collecte de données d’analyses de terre récente se poursuit toujours ? Ou est-ce que la collecte de données s’arrête à 2014 ?

Oui ; la collecte des données 2015-2019 est en cours. Nous avons déjà plusieurs conventions signées mais il reste encore du travail pour convaincre tous les partenaires disposant de données de participer au programme. Les coopératives agricoles et négoces détiennent notamment un grand nombre de résultats qu’il conviendrait de sauvegarder dans la BDAT.
La production de nouveaux résultats statistiques demande encore un travail de vérification des données collectées. Elles seront publiées lorsque ce travail sera validé.

Q3 : A-t-on des informations sur la variation des pH dans les Flandres françaises ou belges ?

Les analyses ont été conduites à l’échelle de la France pour toutes les petites régions agricoles disposant de suffisamment de données. C’est le cas des Flandres françaises uniquement.

Q4 : Sur les cartes présentées, comment interprêter les zones grises ? On ne sait pas, ou bien on peut penser qu’il n’y a pas d’évolution ?

Les zones grises correspondent aux PRA – Petites Régions Agricoles / unité choisie comme entité spatiale de restitution de l’information- où le résultat du test statistique n’est pas significatif. Il n’est pas possible donc de conclure à une évolution dans un sens ou dans l’autre. Cela correspond souvent à des PRA avec peu de données ou avec une forte variabilité des valeurs de pH.

Q5 : Cette analyse historique de la BDAT serait très intéressante sur le critère Taux de matière organique (en lien avec le sujet 4/1000)

En effet, mais il n’est pas possible de calculer de manière précise les stocks de C avec les données de la BDAT. Il manque les données sur la profondeur et la densité apparente.

Q6 : Lien entre la fertilisation azote liquide ou soufre au printemps et baisse des pH saisonniers ?

La baisse du pH est associé à la reprise de l’activité microbienne et plus globalement aux modifications sur le cycle de l’azote. C’est en ce sens que l’apport d’un fertilisant peut jouer, mais on ne sait pas en quantifier l’effet.

Effet du pH du sol sur les émissions de composés azotés gazeux, ammoniac (NH3) et protoxyde d’azote (N2O)
Catherine Hénault et Sophie Génermont – Inrae

Q7 : Question sur l’effet du lisier sur le pH : Dans l’étude présentée, on montre des apports de 133 m3/ha. Est-ce que l’évolution du pH est dû au lisier ou à la dose très élevée qui a rendu le milieu anaérobie. Pour rappel, dans la pratique courante, on applique des doses d’environ 15-25 m3/ha de lisier.

Ce jeu de données est en effet ancien (1994), et le lisier avait été « un peu surdosé » pour différentes raisons expérimentales. L’augmentation observée du pH est dûe en grande partie à la volatilisation du dioxyde de carbone issu des carbonates dissous contenus dans le lisier au moment de son apport ainsi que très probablement à la volatilisation aussi rapide des acides gras volatils contenus dans le lisier immédiatement après l’épandage. Les émissions des acides gras volatils n’ont en effet pas été suivies lors de cette expérimentation, mais d’autres études de la littérature confirment ces éléments.
NB : ces effets du lisier, et des différents processus observés, ne sont des effets que très superficiels et transitoires sur le pH de la surface du sol, et même plutôt de complexe sols-lisier.

Q8 : Avec quel produit (comment?) sont acidifiés les lisiers au Danemark ? Quel acide est utilisé (phosphorique, nitrique, sulfurique) ? Observe-t-on des problèmes de moussage ou de dégagement d’H2S suite au mélange de l’acide ?

Plusieurs types d’acides ont été étudiés et peuvent être utilisés : des acides forts et en particulier l’acide sulfurique (sans doute le plus utilisé), mais aussi l’acide chlorhydrique et l’acide nitrique (qui conduit à un apport d’azote supplémentaire à bien considérer) ; ainsi que d’autres acides comme le sulfate d’aluminium ou des acides organiques (ex : acide benzoïque, acide acétique, acide lactique), mais moins efficaces. Je n’ai pas trouvé mentionnés des problèmes de moussage, l’enrichissement en H2S est mentionné être faible et bénéfique pour les cultures. Une récente étude britannique a testé l’efficacité de l’auto-acidification des lisiers au stockage par ajout de sucre de brasserie, qui a conduit à une réduction à la fois des émissions de NH3 et de CH4.
Au Danemark, les sociétés qui commercialisent des méthodes d’acidification utilisent de l’acide sulfurique, plus ou moins concentré (96 – 50%). Ce sont des solutions « clé en main » eu égard aux dangers que représentent les acides forts très concentrés qui sont proposées, limitant la manutention de l’acide au strict minimum, et associées à un dispositif de contrôle du pH du mélange acide-lisier : un tank d’acide disposé sur le tracteur même par exemple, à l’épandage. Plus d’informations, avec un lien vers des présentations faites lors d’un séminaire de promotion de la méthode en septembre 2016, peuvent être trouvées sur la page : https://eng.mst.dk/trade/agriculture/acidification/
Il y a aussi le site du projet Interreg qui est consacré à cette méthode : http://balticslurry.eu/
Je n’ai pas trouvé d’information sur un potentiel moussage ou dégagement d’H2S.

Q9 : Remarque d’un participant : Question à explorer sur l’acidification des lisiers :
L’idée d’acidifier les lisiers vient de la notion de pKa acide/base de l’équilibre NH4+/NH3.
A noter que l’apport de CaCO3 mélangé à un lisier + incubation, déplace les équilibres N-Organique vers N-minéral et N-minéral (NH4) vers N-Nitrique (NO3) permettant d’observer une réduction des émissions de NH3 car le compartiment NH4, en proie à la volatilisation, est considérablement réduit. C’est une piste à explorer car l’acidification d’un lisier s’apparente à un effet retard du potentiel de volatilisation qui, en principe, surgira dans le champ après épandage / réaction NH4+ => NO3- irréversible.

Merci pour cette remarque. Cependant, il faudrait caractériser l’évolution du pH du lisier après enrichissement en CaCO3. Il est probable que le pH augmente, et que la volatilisation soit favorisée, avant que l’azote ammoniacal produit par minéralisation ne soit oxydé en azote nitrique. En incubations fermées, ce ne doit pas être un problème, mais « à l’air » c’en est sans doute un.
Dans le cas de l’acidification des lisiers, l’azote ammoniacal est donc majoritairement sous forme NH4, la volatilisation est extrêmement réduite, et l’azote ammoniacal est adsorbé sur la fraction argilo-humique, nitrifié, organisé, et absorbé par les plantes et donc soustrait à la volatilisation relativement durablement (sauf pour l’adosprtion). Bien que le pH du lisier augmente après l’apport, cette augmentation est moins rapide et atteint des niveaux plus faibles que lorsqu’il n’y a pas d’acidification du lisier préalablement à l’apport.

Q10 : Pensez-vous intégrer les pratiques d’épandage de digestats et proposer des solutions pour optimiser leur efficience ?

C’est un objectif de différentes études en cours qui visent (i) à tester le modèle Volt’Air dans le cadre des projets Recaps et FertiDig pour les digestats en mobilisant les données du SOERE-PRO, des projets Divagro, MétaMétha et EvaPro ; (ii) éventuellement le faire évoluer ; (iii) caractériser les pratiques de fertilisation avec ces digestats (projet Amp’Air et Fertidig), et la volatilisation associée, et (iv) caractériser les potentiels de réduction de la mise en œuvre des politiques publiques (projet PolQA) sur ces engrais.

Q11 : Quelle est la source de la carte pH utilisée diapo 76 ?

La carte représente le pH de surface du sol dominant de chacune des petites régions agricoles (PRA) utilisé pour l’outil Cadastre_NH3 (spatialisation de la volatilisation d’ammoniac) : le sol dominant est extrait de la ESDB (European Soil Data Base) et les propriétés des sols de la Base de Données d’Analyses des Terres – BDAT. Le pH n’est représenté que pour les surfaces agricoles, sur la base de Corine Land Cover.

Q12 : La caractéristique d’hydromorphie des sols est-elle prise en compte dans la modélisation de la dénitrification potentielle? –> milieux potentiellement humides de France

La dénitrification potentielle des sols est en général issue d’une mesure, soit sur sol destructuré (DEA) ou sur du sol structuré (PDR). Cette derniere est utilisée en modélisation, combinée aux propriétés de fonctionnement hydrique du sol pour calculer l’activité réelle de dénitrification / les émissions de N2O.

Q13 : L’étude Cuhel,2020 citée diapo 65 est faite au labo sur un sol dont on a changé le pH ou au champ avec différent type de sol ?

L’étude a été réalisée à partir d’une parcelle expérimentale comprenant différentes sous-parcelles. Certaines sous-parcelles ont reçu une solution de KOH pour faire remonter le pH et d’autres sous-parcelles ont reçu une solution de H2SO4 pour diminuer le pH. Les mesures d’activités potentielles de dénitrification ont été faites au labo sur des échantillons de sol destructurés.

Q14 : Quel est le poids des conditions d’oxydo-réduction des sols VS conditions pH sur l’émission du N2O ? Est-il plus pertinent de jouer sur la compaction/aération ou le chaulage ?

Jouer sur les conditions d’oxydo-réduction, ce serait (selon la compréhension que j’ai de la question) dans le but d’éviter les conditions d’anoxie dans le sol et ainsi le fonctionnement de la dénitrification. C’est une stratégie pour eviter la production de N2O par dénitrification . A titre d’exemple, le drainage des sols est une pratique que l’on pourrait associer à cette stratégie. Des mesures réalisées dans des systèmes drainés vs des systèmes non drainés montrent en général des flux plus faibles en parcelles drainées qu’en parcelles non drainées (publications de Grossel et al.). Il faut ensuite s’intéresser aux flux de nitrates. Des travaux récents sur les émissions indirectes de N2O en systèmes drainés n’ont pas confirmé les très fortes intensités de ces émissions indirectes observées aux Etats Unis.

Chauler les sols acides, c’est une autre stratégie, on n’évite pas la dénitrification des nitrates mais on favorise la réduction du N2O en N2 pour éviter les émissions de N2O et boucler le cycle de l’azote.

Selon les situations, on peut envisager mettre l’accent sur l’une ou l’autre de ces stratégies, selon la connaissance que l’on a du fonctionnement de ce système et la capacité que l’on pourrait avoir à gérer l’anoxie dans le sol. On peut aussi les utiliser de façon complémentaire.

Questions/Discussion

Fertilité organo-biologique : impacts du statut acido-basique sur l’abondance, l’activité et la diversité des organismes du sol
Matthieu Valé – Responsable technique du pôle Agriculture – Auréa AgroSciences et animateur du groupe FOrBS “Fertilité Organique et Biologique des Sols” du Comifer

Q15 : Y a-t il des méthodes pour homogénéiser des résultats analytiques obtenus avec différentes dilutions eau /soil dans la mesure du pH?

A ma connaissance non, car les relations entre méthodes sont dépendantes de nombreux facteurs, dont le type de sol, l’usage, …

Q16 : Quelles sont les grandes tendances de pH de la rhizosphère des cultures les plus fréquentes ?

Difficile de répondre, car cela dépend à la fois du pH du sol non rhizosphérique, et du stade de développement de la culture. Mais en grande majorité, cela doit se situer en 5.8 et 6.2, à l’exception de certaines légumineuses (symbiose avec rhizobium optimale autour de pH 7.0 – 7.5)

Q17 : L’effet pH sur vers de terre est mesuré sous quel couvert végétal ? l’effet peut être variable en fonction de la culture

Les données présentées sont des préférences écologiques, qui confondent tout type de couverture de sol, d’usage et type de sol. L’effet du type de culture sur l’abondance des vers de terre ne se fait pas principalement par le pH de la rhizosphère, mais par la densité du chevelu racinaire, l’intensité de l’exsudation racinaire, la libération de certains composés, …

Q18 : Parle-t-on dans cette présentation de pHeau ou de pH KCl ?

pH eau quasi exclusivement

Q18 : Lien richesse microbienne X Sols : la carte diapo 110 montre des tendances inverses (Ex.:zone Bretagne très différente du Massif central – alors que se sont secteurs à tendance acide)

Concernant la carte de diversité bactérienne, l’exemple cité montre bien que l’explication est multifactorielle : certes le pH joue mais en interaction avec la texture et le statut organique, ce qui explique les différences entre 2 zones acides que sont la Bretagne et le massif central. L’interaction entre les différents paramètres rend difficile l’individualisation de l’effet d’un seul paramètre.

Q19 : L’acidification racinaire peut-elle débloquer le phosphore ?

C’est effectivement un des mécanismes en jeu : le positionnement du pH à des niveaux favorables pour l’assimilation des nutriments comme les oligo-éléments ou le phosphore. Mais attention, cela concerne uniquement la part de phosphore mobilisable, il ne faut pas s’imaginer que l’acidification de milieux neutres à basiques va mettre en solution l’ensemble du phosphore total du sol.

Q20 : Des travaux de recherche ont bien montré que l’activité bactérienne et notamment nitrifiante peuvent avoir lieu même dans un sol forestier acide. Peut-on conclure avec un effet négatif du pH sur l’activité microbienne ?

L’activité nitrifiante ne s’arrête pas en milieu acide mais elle est bien plus faible qu’en milieu neutre.

Q21 : Existe-t-il des données sur la relation pH et larves de ravageurs (tipules/taupins/hannetons…) ?

Je ne dispose pas de références biblio sur le sujet, cela nécessiterait un travail biblio supplémentaire pour y répondre

Q22 : Le paramètre profondeur du sol n’a pas été considéré dans les présentations. Ce paramètre joue un rôle sur l’activité microbienne, la diffusion de l’oxygène et donc les réactions chimiques et enzymatiques. Est ce qu’il existe des données prenant en compte ce paramètre dans les mécanismes présentés ?

Effectivement l’activité biologique décroit dans les horizons profonds, notamment à cause de la diffusion d’oxygène limitée au-delà de 50 cm, mais également par la raréfaction des sources de nourriture (MO plus faible en profondeur). Les éléments présentés concernent la couche de surface, mais sans précision fine. On sait que le pH est plus faible sur les premiers cm de sol, mais je ne sais pas si des travaux ont regardé l’impact du gradient de pH sur la biologie des sols.

Q23 : A propos de la courbe de minéralisation de l’N Clivot et al. 2017 (diapo 98): On observe sur cette courbe une minéralisation avec une phase “plateau” à pH = 8 et au délà. Celà veut-il dire que le poste Mh est élevé en sol calcaire ? Un peu surpris de ne pas avoir une courbe en cloche comme pour le C/N entre pH et minéralisation de l’azote.

Attention à ne pas confondre pH basique et présence de calcaire. Certes la présence de calcaire engendre nécessairement un pH élevé (> 8), mais on peut avoir des pH > 8 sans calcaire (ex : limons du Nord de la France). Donc oui, en l’absence de calcaire, un pH basique n’est pas pénalisant pour la minéralisation de l’azote. Par contre la relation entre minéralisation et teneur en calcaire est bien négative. Il faut par contre rester prudent sur la généralisation de ces éléments, car l’approche statistique utilisée n’est pas nécessairement explicative et peut cacher des effets non identifiés.

Q24 : Avons-nous des infos sur l’effet variétal des espèces tout le reste étant égal par ailleurs sur le pH rhizosphérique (notamment par rapport au microbiome) ?

Cela nécessiterait un travail bibliographique supplémentaire pour y répondre

Q25 : Y a-t-il un impact du pH sur la mycorhization?

Cela nécessiterait un travail bibliographique supplémentaire pour y répondre

Questions/Discussion

Disponibilité du phosphore du sol pour les plantes cultivées et statut acido-basique
Christian Morel/Pascal Denoroy – Inrae

Q26 : En présence de situations de rotations betteravières sur des limons battants avec des pH élevés entre 8 et 8,5. Dans ces situations nous voudrions faire baisser les pH qui malgré l’absence de chaulage depuis plus de 10-15 ans ne baisse pas. Comment faire ? Quoi faire ? J’ai l’impression que plus le pH est élevé plus il est difficile de le faire baisser.

Quand on est dans des sols à pH élevé (au niveau indiqué) c’est généralement qu’il y a une forte réserve de carbonates. Dans ce cas, il faudrait solubiliser ce stock de carbonate pour faire bouger le pH, ce qui est extrêmement lent. On peut en effet avoir l’impression que le pH n’évolue pas et en pratique ce n’est guère possible à échelle de temps humaine (et peut-être pas souhaitable, en particulier vis à vis de la battance)

Q27 : Dans les limons de Picardie avec des pH élevés de l’ordre de 8 ou 8.5, je me pose des questions quant aux apports de phosphore (plutôt au printemps que automne) ; je me pose des questions sur la disponibilité car certaines personnes avançaient jusqu’à une disponibilité nulle et si c’était le cas nous aurions des rendements très mauvais !

Dans des sols à pH élevé, surtout carbonatés, avec des carbonates solubles (calcaire actif), le phosphate soluble, par exemple, celui d’apport de superphosphate, tend à évoluer avec le temps vers des formes peu solubles ou insolubles. Les formes d’apport de P peu solubles (phosphate naturel) restent peu solubles voire diminuent la solubilité du phosphore préexistant. Dans cette situation, il convient d’apporter le phosphate au plus près des besoins des cultures (donc l’apport de printemps est plus indiqué que l’apport d’automne, au moins pour des cultures de printemps), sous des formes solubles ou organiques, voire en localisation, afin que le phosphate soit près des racines dans les phases précoces de la culture qui sont les plus sensibles à la déficience du sol en P.

Q28 : pH et P : peut-être faudrait-il distinguer le pH du sol et celui à proximité des racines? Dans les labos, la conclusion est pH acides préférables mais il semble préférable d’intégrer les caractéristiques de l’ensemble du profil de sol qui a un effet sur de nombreux paramètres bio.

Les reférences de mesure de pH disponibles pour le raisonnement sont mesurées dans le sol brut et en place (“pH du sol”). Les réponses des cultures obtenues expérimentalement, et qui sont utilisées comme référence dans le raisonnement, intègrent de fait la petite modification de pH qui a lieu au contact des racines.

Q29 : Les conclusions sur la disponibilité des phosphates naturels VS pH peuvent-ils être pris comme généralité indépendamment du système plante/rhizosphère ? De manière plus macro, la question de la solubilisation du Phosphore / phyllobiome est-il, selon vous, un sujet d’avenir pour le monde agricole ?

La diversité des systèmes plante-rhizosphère est déjà largement prise en compte dans les nombreux essais au champ qui depuis des décennies ont conduit aux conclusions actuelles. Il y a eu beaucoup d’essais de divers phosphates naturels, seuls ou avec d’autres produits (biochar, microorganismes, …). Il est donc peu probable qu’il y ait beaucoup à investiguer davantage, sauf à introduire des hypothèses d’OGM (plante ou microorganismes) ce qui posera d’autres questions.

Q30 : La concentration du P dans la solution du sol due à la fertilisation augmente plus fortement en sols acides à pH 5,5. Cela entraine-t-il un risque accru de transfert du P aux eaux douces ?

Théoriquement oui, mais la variation n’est pas très forte et surtout il y a bien d’autres facteurs plus importants qui contrôlent le transfert du phosphate en solution vers les eaux douces.

pH et assimilabilité des oligo-éléments – Modification de la biodisponibilité des oligo-éléments (Cu, Zn, Mn, Fe, B, Mo) ou des ETM (éléments traces métalliques)
Jean-Yves Cornu – Inrae

Questions/Discussion

pH et structure du sol
Jean-Luc Julien – Academie d’Agriculture de France

Ouverture de l’après-midi par le président de séance Jérémy Guil, Responsable d’équipe Gestion des sols à la Chambre Régionale d’Agriculture de Bretagne

Actions mises en œuvre pour
• remédier au risque d’acidification des sols cultivés et des prairies
• améliorer la nutrition des plantes dans les différentes valeurs du pH (pour les sols acides comme calcaires)

Amendement basique, propositions pour une nouvelle approche du calcul de dose de correction
François Servain – Ldar

Synthèse des suivis de carbonates résiduels dans les essais aux champs pour l’estimation du besoin en base à l’entretien
Hélène Lagrange – Arvalis-Institut du végétal

Questions/Discussion

La pratique du chaulage : particularités des productions fourragères de luzerne et d’herbe
Antony Uijttewaal – Arvalis-Institut du végétal

Dans les limons de l’Ouest, gains de rendement et de marge corrélés avec le pH eau du sol
Laurent Varvoux – Terrena

Raisonnement du chaulage basé sur les analyses de terre pratiquées avec un zonage intra-parcellaire
Baptiste Cuny – Maïsadour

Questions/Discussion

Impact de la fertilisation phosphatée en sols à pH basique (analyses techniques et économiques)
Philippe Gérard – Vivescia

Questions/Discussion

Autres Questions

Q31: Comment faire baisser les pH en limons battants avec pH à 8 et améliorer la disponibilité du phosphore?

Un Limon battant qui se situe à pH à 8,0 (dans la mesure où ce sol ne correspond pas à un sol calcaire) est à ce niveau de pH suite à des apports d’Amendement Minéraux Basiques importants et répétés. Cette pratique concerne la région Nord France sur des sols de limons en système de cultures betterave ou endive. L’apport d’AMB correspond souvent à des cas d’apports d’écume de sucrerie avec des doses de l’ordre de 10 t/ha. Ces apports répétés d’AMB entraînent une augmentation de pH au fil des années avec peu à peu une teneur en calcaire total qui augmente jusqu’à que ces sols deviennent artificiellement légèrement carbonatés.
Si l’on stoppe cette pratique de chaulage, la redescente du pH (par acidification natuelle) sera lente avant d’atteindre des valeurs de pHeau plus proche 7,0.
Il n’y pas possibilité d’abaisser rapidement le pH par des apports de produits qui auraient un rôle fortement acidifiant.
La gale de la pomme de terre étant favorisée par des pH basiques, des expérimentations ont été réalisées avec pour objectif d’abaisser le pH de ces sols basiques (apport de pastilles de soufre sur la butte). L’effet d’abaissement de pH n’est que très temporaire et rapidement le pH retrouve sa valeur initiale.

Conclusions – Clôture de la Journée Technique

AAF : Académie d’Agriculture de France

APCA : Assemblée Permanente des Chambres d’Agriculture

Arvalis Institut du Végétal : Institut technique agricole

Aurea AgroSciences : Laboratoire d’analyse et de conseil agro-environnemental

CRA Bretagne : Chambre Régionale d’Agriculture de Bretagne

Comifer : Comité français d’étude et de développement de la fertilisation raisonnée

EUROFINS Galys : Laboratoire d’analyse

Inrae : Institut national de recherche pour l’agriculture, l’alimentation et l’environnement

Ldar : Laboratoire Départemental d’Analyses et de Recherche

Maïsadour : Groupe coopératif agroalimentaire

Terrena : Groupe coopératif agroalimentaire

Vivescia : Groupe coopératif agroalimentaire

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